ELISA实验中酶标记抗体的方法主要有两种：戊二醛交联法和过碘酸盐氧化法。接下来我们就来具体介绍一下这两种方法。

1、戊二醛交联法

戊二醛是一种双功能团试剂，它可以使酶与蛋白质的氨基通过它而联接。碱性磷酸一般用此法进行标记。交联方法分一步法、两步法两种。在一步法中戊二醛直接加入酶与抗体的混合物中，反应后既得酶标记抗体。
ELISA实验中常用的酶一般都用此法交联。它具有操作简便、有效（结合率达60%～70%）和重复性好等优点。缺点是交联反应是随机的，酶与抗体交联时分子间的比例不严格，结合物的大小也不均一，酶与酶，抗体与抗体之间也有可能交联，影响效果。在两步法中，先将酶与戊二醛作用，透析除去多余的戊二醛后，再与抗体作用而形成酶标抗体。也可先将抗体与戊二醛作用，再与酶联结。两步法的产物中绝大部分的酶与蛋白质是以1:1的比例结合的，较一步法的酶结合物更有助于本底的改善以提高敏感度，但其偶联的有效率较一步法低。

    2、过碘酸盐氧化法
    本法只适用于含糖量较高的酶。辣根过氧化物酶的标记常用此法。反应时，过碘酸钠将HRP分子表面的多糖氧化为醛基很活泼，可与蛋白质上的氨基形成Schiff氏碱而结合。酶标记物按克分子比例联结，其最佳比例为：酶：抗体=1～2：1。此法简便有效，一般认为是HRP最可取的标记方法。

按以上方法制备的酶结合物一般都混有未结合物的酶和抗体。理论上，结合物中混有的游离酶一般不影响实验最后的酶活性测定，因经过彻底洗涤，游离酶可被除去，并不影响最终的显色。但游离的抗体则不同，它会与酶标抗体竞争相应的固相抗原，从而减少了结合到固相上的酶标抗体的量。因此制备的酶结合物应予纯化，去除游离的酶和抗体后用于检测，效果更好。
结合物制得后，在用作ELISA实验前尚需确定其适当的工作浓度。使用过浓的结合物，既不经济，又可使本底增高。结合物的浓度过低，则又影响检测的敏感性。所以必须对结合物的浓度予以选择。最适的工作浓度就是指结合物稀释至一定浓度时，能维护一个低的本底，并获得测定的最佳灵敏度，达到最合适的测定条件和测定费用的节省。就酶标抗体本身而言，它的有效工作浓度是指与其相应抗原包被的载体作试验时，能得到阳性反应的最高稀释度。

以上就是ELISA实验中酶标记抗体的方法，希望对大家的科研工作有所帮助。